- Comprendre les principes fondamentaux de la cytométrie en flux
- Analyser et interpréter les données obtenues par cytométrie en flux
Formations : Biologie moléculaire - Techniques nouvelles
- Mobiliser les compétences en techniques chromatographiques (LC-UV ; GC-FID ; GC-MS ; LC-MS)
- Mettre en application sur des matrices biologiques (sang, urines, salive…)
- Identifier les techniques utilisées en cytogénétique conventionnelle : caryotypes prénatal, post-natal et hémopathies malignes
- Comprendre le processus et l'impact de l'automatisation
- Maîtriser les techniques en caryotype moléculaire basées sur les puces à ADN
- Interpréter correctement les résultats obtenus à partir des puces à ADN
- Comprendre l'intérêt de ces techniques dans le diagnostic pré-natal, post-natal et pour l'étude des pathologies acquises
- Comprendre les principes fondamentaux de la culture cellulaire
- Maîtriser les techniques de base de la culture cellulaire en laboratoire
- Appliquer les bonnes pratiques d'assurance qualité pour assurer la fiabilité des expériences de culture cellulaire en situation professionnelle
- Identifier l’ensemble des techniques utilisant des sondes nucléotidiques marquées, en insistant sur les applications de caractérisation des hémopathies et des tumeurs solides
- Comparer leurs apports spécifiques et les contraintes dans leur mise en oeuvre :
- Hybridation avec sonde unique ou cocktail de sondes
- FISH sur chromosome, - FISH sur noyaux interphasiques - Hybridation génomique comparative
- Analyse sur puces à ADN
- Comprendre les principes fondamentaux du séquençage de l'ADN
- Interpréter correctement les données de séquençage de l'ADN
- Comprendre les principes fondamentaux du séquençage digital d’ADN, ou Séquençage Nouvelle Génération (NGS)
- Construire un protocole expérimental dédié à l’analyse d’un gène, d’un groupe de gènes, d’un génome, ou d’un transcriptome
- Comprendre les différentes technologies disponibles aujourd’hui (454, Illumina et IonTorrent)
- Comprendre les bases des protocoles (matériel de départ, construction des librairies, séquençage, validation des résultats)
- Comprendre les différentes étapes intervenant dans l’analyse de données de séquençage haut-débit, ou NGS, dans le domaine du diagnostic médical (maladies rares ou héréditaires, génétique somatique)
- Détecter et interpréter des variations génomiques dans un contexte pathologique, grâce à des outils et méthodes bioinformatiques employés dans l’analyse de ces données
PCR quantitative
- Comprendre et appliquer les diverses techniques de quantification des acides nucléiques (ARN et ADN) par PCR en temps réel
- Étudier et appliquer la technologie de la PCR en temps réel (Real-Time PCR)
- Maîtriser les généralités en biologie cellulaire et moléculaire
- Appliquer les principales techniques de biologie moléculaire
- Identifier les différentes applications de la PCR, du séquençage
- Pratiquer la PCR digitale
- Maîtriser les réglages et l'utilisation du microscope optique
- Appliquer les bonnes pratiques pour obtenir des observations de qualité
- Effectuer l'entretien de base du microscope pour assurer son bon fonctionnement
- Comprendre les principes fondamentaux de la PCR quantitative (qPCR)
- Appliquer les techniques de qPCR dans un contexte professionnel
- Interpréter les résultats d'une qPCR
- Choisir la méthode de qPCR la plus adaptée à une situation donnée
- Comprendre les principes fondamentaux du séquençage haut débit
- Maîtriser les techniques et les étapes clés du séquençage haut débit
- Analyser et interpréter les données générées par le séquençage haut débit
- Comprendre les principes fondamentaux des techniques de biologie moléculaire
- Appliquer ces techniques dans un contexte professionnel
- Interpréter les résultats obtenus grâce à ces techniques
- Choisir la technique de biologie moléculaire la plus adaptée à une situation donnée
- Comprendre les principes fondamentaux de la biologie moléculaire
- Connaitre les techniques couramment utilisées en biologie moléculaire
- Interpréter les résultats obtenus grâce à ces techniques